Centre déducation clinique

Question 1. Quels tests sont recommandés pour diagnostiquer les parasites intestinaux?

Alors que les ovules et le parasite (O & P) est commandé le plus souvent, il nest pas recommandé comme test de routine pour le diagnostic des parasites intestinaux aux États-Unis car de nombreux parasites intestinaux ne sont pas détectables de manière fiable par O & P. Les recommandations de test pour des agents pathogènes parasitaires spécifiques sont énumérées ci-dessous:

Question 2. Quels organismes pathogènes sont couramment détectés dans un O & Examen P (TC681X)?

Quest Diagnostics propose des tests O & P conformément aux directives établies par la clinique Laboratory Standards Institute (CLSI) et de concert avec les meilleures pratiques publiées dans divers livres de presse de lAmerican Society of Microbiology (ASM) pour optimiser la collecte, les tests et le signalement des pathogènes parasitaires humains. Les examens O & P peuvent détecter des trophozoïtes et / ou des kystes de pathogènes parasitaires humains importants, notamment Cryptosporidium sp, Coccidia sp, Entamoeba histolytica, E histolytica / dispar, Giardia sp, Isospora sp, Microsporidia sp , Schistosoma mansoni et Schistosoma haematobium, ainsi que des parasites non pathogènes qui indiquent une exposition à des sources environnementales impures.

Question 3. Existe-t-il des recommandations pour des tests parasitaires spécifiques dans certaines populations de patients?

Oui, les tests recommandés peuvent varier en fonction des symptômes, des antécédents de voyage et de la prévalence géographique de la maladie. Des conseils sur ce sujet basés sur les recommandations ASM et IDSA sont fournis dans le tableau ci-dessous2,14:

Question 4. Pourquoi plusieurs échantillons recommandés pour les examens des selles humaines?

Les parasites ne peuvent être éliminés que par intermittence et des tests répétés peuvent être nécessaires pour la détection. Pour un examen de routine des parasites avant le traitement, un minimum de 3 échantillons, prélevés un jour sur deux, est recommandé. Pour les patients sans diarrhée, 2 des échantillons doivent être prélevés après des mouvements normaux, et 1 après un cathartique, tel que le sulfate de magnésium. Si le patient a la diarrhée, nutilisez pas de laxatif. La soumission de plus dun échantillon prélevé le même jour naugmente généralement pas la sensibilité du test.2-5

Pour le test de lantigène Giardia, il est recommandé de tester des échantillons prélevés sur 2 jours différents pour améliorer la sensibilité. 5

Question 5. Quels supports de transport Quest Diagnostics accepte-t-il pour les examens de selles, et pourquoi?

Les supports de transport préférés pour les ovules de selles et les examens de parasites comprennent un seul flacon de Total-Fix ou des flacons appariés de 10% de formol et de PVA. Ces milieux de transport ont satisfait aux critères de vérification et de validation de fiabilité par rapport à nos méthodologies spécifiques de test des agents pathogènes parasitaires humains.6-13

Question 6. Quels sont les milieux de transport que Quest Diagnostics naccepte pas pour les examens de selles, et pourquoi?

Nous nacceptons pas Ecofix, Protofix, SAF ou tout autre agent de conservation en dehors de ceux mentionnés ci-dessus. Tous les milieux de transport en plus de ceux répertoriés comme « acceptables » ci-dessus nont pas été validés ou nont pas satisfait aux critères de validation pour une utilisation avec nos méthodologies de test spécifiques.6

Question 7. Pourquoi les études de selles ne sont-elles pas recommandées pour les patients hospitalisés ?

Les données suggèrent que pour les patients qui ont été hospitalisés pendant plus de 3 jours, la diarrhée est généralement le résultat de causes non parasitaires.2

Question 8. Quelles sources non fécales sont appropriés pour lexamen O & P?

Lurine est acceptable pour la détection de Schistosoma haematobium. Lurine doit être collectée vers midi et soumise dans un appareil stérile pour fuites. contenant de lépreuve et transporté au laboratoire réfrigéré dès que possible.

Les crachats ou les lavages bronchoaveolar peuvent être soumis dans Total-Fix, 10% de formol ou sans conservateur pour examen lorsque des œufs de Paragonimus westermani, des larves de Strongyloides stercoralis, Ascaris lumbricoides larve, ou larve ankylostome sont suspectés. Les échantillons doivent être réfrigérés et transportés au laboratoire dès que possible.

Le CDC recommande les sources non fécales supplémentaires énumérées ci-dessous.12 Notez que lanalyse de ces échantillons peut nécessiter lapprobation du directeur médical.

• Les aspirations duodénales doivent être soumises dans Total-Fix ou formol à 10% pour examen en cas de suspicion de Giardia duodenalis ou de Strongyloides stercoralis.
• Le matériel de sigmoïdoscopie et les abcès du foie et des poumons doivent être soumis Total-Fix ou PVA en cas de suspicion dEntamoeba histolytica.

1. M-28-A2. Directive CLSI. Procédure de récupération et didentification des parasites du tractus intestinal. Approved Guideline, 2005.
2. Garcia LS, Bruckner DA. Parasitologie médicale diagnostique. 5e éd. Washington, DC: Société américaine de microbiologie; 2007.
3. Shimizu RY, Garcia LS. Chapitre 133: Prélèvement, transport et traitement des échantillons: parasitologie. Dans Jorgensen JH, Pfaller MA, Carroll KC, et al, eds. Manuel de microbiologie clinique. 11e éd. Washington, DC: Société américaine de microbiologie; 2015.
4. Leber AL., Éd. Manuel des procédures de microbiologie clinique. 4e éd. Washington DC: Société américaine de microbiologie; 2016.
5. Wheatley WB. Une procédure de coloration rapide pour les amibes intestinales et les flagellés. Suis J Clin Pathol. 1951; 21: 990-991.
6. Medical Chemical Corporation, Inc. Procédure du système de collecte de selles Total-Fix ™. 2013.
7. Tille PM. Bailey & Microbiologie diagnostique de Scott. 13e éd. St Louis, MO: Elsevier; 2014.
8. http://www.questdiagnostics.com/testcenter/TestCenterHome.action.
9. Garcia LS, Shimizu RY. Évaluation de la morphologie des protozoaires intestinaux dans des échantillons fécaux humains conservés dans EcoFix: comparaison du colorant trichrome de Wheatley et EcoStain. J Clin Microbiol. 1998; 36: 1974-1976.
10. Fedorko DP, Williams EC, Nelson NA, et al. Réalisation de trois tests immunologiques enzymatiques et de deux tests de fluorescence directe pour la détection de Giardia lamblia dans des échantillons de selles conservés dans ECOFIX. J Clin Microbiol. 2000; 38: 2781-2783.
11. McHardy IH, Wu M, Shimizu-Cohen R., et al. Détection des protozoaires intestinaux au laboratoire clinique. J Clin Microbiol. 2014; 52: 712-720.
12. https://www.cdc.gov/dpdx/diagnosticprocedures/stool/specimencoll.html.
13. https://catalog.hardydiagnostics.com/cp_prod/Content/pdf/Comments%20on%20TOTAL-FIX-HardyD.pdf.
14. Shane AL, Mody RK, Crump JA, et al. 2017 Infectious Diseases Society of America Clinical Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Infectious Diarrhea. Clin Infect Dis. 2017; 65 (12): e45-80.