Kliininen koulutuskeskus

Kysymys 1. Mitä testejä suositellaan suolen loisten diagnosointiin?

Vaikka munasolut ja loiset (O & P-tentti) määrätään useimmiten, sitä ei suositella rutiinitestinä suoliston loisten diagnosoimiseksi Yhdysvalloissa, koska O & P tentti. Testisuositukset tietyille loispatogeeneille on lueteltu alla:

Kysymys 2. Mitkä patogeeniset organismit havaitaan yleisesti O & P-tentti (TC681X)?

Quest Diagnostics tarjoaa O & P-testin kliinisen tutkimuksen ohjeiden mukaisesti. Laboratory Standards Institute (CLSI) ja yhteistyössä useiden American Society of Microbiology (ASM) -lehtien julkaisemien parhaiden käytäntöjen kanssa ihmisparasiittisten patogeenien keräämisen, testaamisen ja raportoinnin optimoimiseksi. O & P-tentit voivat havaita tärkeiden ihmisen loislääke-patogeenien, mukaan lukien Cryptosporidium sp, Coccidia sp, Entamoeba histolytica, E histolytica / dispar, Giardia sp, Isospora sp, Microsporidia sp , Schistosoma mansoni ja Schistosoma haematobium sekä ei-patogeeniset loiset, jotka viittaavat altistumiseen epäpuhtaille ympäristölähteille.

Kysymys 3. Onko suosituksia erityisistä loiskokeista tietyissä potilasryhmissä?

Kyllä, suositeltava testaus voi vaihdella oireiden, matkatapahtumien ja sairauksien maantieteellisen esiintyvyyden mukaan. ASM: n ja IDSA: n suosituksiin perustuva aihe on annettu alla olevassa taulukossa2, 14:

Kysymys 4. Miksi useita näytteitä, joita suositellaan ihmisen ulosteentutkimuksiin?

Loisia voidaan päästää vain ajoittain, ja toistuva testaus voi olla tarpeen havaitsemiseen. Parasiittien rutiinitutkimusta varten ennen hoitoa suositellaan vähintään 3 näytettä, jotka on kerätty vuorotellen päivinä. Potilaille, joilla ei ole ripulia, 2 näytettä olisi kerättävä normaalien liikkeiden jälkeen ja yksi katartisen, kuten magnesiumsulfaatin jälkeen. Jos potilaalla on ripuli, älä käytä laksatiivia. Useamman kuin yhden samana päivänä kerätyn näytteen lähettäminen ei yleensä lisää testin herkkyyttä. 2-5

Giardia-antigeenitestauksessa herkkyyden parantamiseksi suositellaan kahden eri päivän aikana kerättyjen näytteiden testaamista. 5

Kysymys 5. Mitä kuljetusvälineitä Quest Diagnostics hyväksyy jakkatutkimuksiin ja miksi?

Suositeltavat kuljetusvälineet jakkaran munasolujen ja loisten tutkimuksiin sisältävät joko yhden Total-Fix-injektiopullon tai pariksi valmistetut 10% formaliinia ja PVA: ta sisältävät injektiopullot. Nämä kuljetusvälineet ovat täyttäneet luotettavuuden varmistus- ja validointikriteerit ihmisen erityisten loislääke-patogeenien testausmenetelmien suhteen. 6-13

Kysymys 6. Mitä kuljetusvälineitä Quest Diagnostics ei hyväksy jakkatutkimuksiin ja miksi?

Emme hyväksy Ecofix-, Protofix-, SAF- tai muita säilöntäaineita edellä mainittujen lisäksi. Kaikkia kuljetusvälineitä, lukuun ottamatta niitä, jotka on lueteltu edellä ”hyväksyttävinä”, ei ole validoitu tai ne eivät ole läpäisseet validointikriteerejä käytettäväksi erityisissä testausmenetelmissämme. ?

Tiedot viittaavat siihen, että potilailla, jotka ovat olleet sairaalassa yli 3 päivää, ripuli on yleensä seurausta ei-loisista syistä. 2

Kysymys 8. Mitkä ei-ulosteesta johtuvat lähteet ovat sopivia O & P -tutkimukseen?

Virtsa on hyväksyttävää Schistosoma haematobiumin havaitsemiseksi. Virtsa on kerättävä keskipäivällä ja toimitettava steriiliin, vuotavaan todistettu säiliö ja kuljetettava laboratorioon jäähdytettynä mahdollisimman pian. Epäillään Ascaris lumbricoides- tai koukkumato-toukkia ekimennit tulee jäähdyttää ja kuljettaa laboratorioon mahdollisimman pian.

CDC suosittelee alla lueteltuja muita kuin ulosteesta peräisin olevia lähteitä. 12 Huomaa, että näiden näytteiden testaaminen voi edellyttää lääkärinjohtajan hyväksyntää.

• Pohjukaissuolihaavat tulee toimittaa Total-Fix- tai 10% formaliinitutkimuksessa, kun epäillään Giardia duodenalista tai Strongyloides stercoralista.
• Sigmoidoskooppimateriaali ja maksan ja keuhkojen paiseet tulee toimittaa Total-Fix tai PVA, kun epäillään Entamoeba histolyticaa.

1. M-28-A2. CLSI-ohje. Menettely parasiittien palautumiseksi ja tunnistamiseksi suolistosta. Hyväksytty suuntaviiva, 2005.
2. Garcia LS, Bruckner DA. Diagnostinen lääketieteellinen parasitologia. 5. painos Washington, DC: American Society of Microbiology; 2007.
3. Shimizu RY, Garcia LS. Luku 133: Näytteiden kerääminen, kuljetus ja käsittely: parasitologia. Julkaisussa Jorgensen JH, Pfaller MA, Carroll KC et ai., Toim. Kliinisen mikrobiologian käsikirja. 11. painos Washington, DC: American Society of Microbiology; 2015.
4. Leber AL., Toim. Kliinisten mikrobiologisten menettelyjen käsikirja. 4. painos Washington DC: American Society for Microbiology; 2016.
5. Wheatley WB. Nopea värjäysprosessi suoliston ameballe ja lippulaateille. Olen J Clin Pathol. 1951; 21: 990-991.
6. Medical Chemical Corporation, Inc. Total-Fix ™ -jakkojen keräysjärjestelmä. 2013.
7. Tille pääministeri. Bailey & Scottin diagnostiikkamikrobiologia. 13. painos St Louis, MO: Elsevier; 2014.
8. http://www.questdiagnostics.com/testcenter/TestCenterHome.action.
9. Garcia LS, Shimizu RY. Arvio suoliston alkueläinten morfologiasta EcoFixissä säilytetyissä ihmisen ulosteiden näytteissä: Wheatleyn trikromiväri ja EcoStain. J Clin Microbiol. 1998; 36: 1974-1976.
10. Fedorko DP, Williams EC, Nelson NA et ai. Kolmen entsyymi-immunomäärityksen ja kahden suoran fluoresenssimäärityksen suorittaminen Giardia lamblian havaitsemiseksi ulosteenäytteistä, jotka on säilytetty ECOFIX: ssä. J Clin Microbiol. 2000; 38: 2781 – 2783.
11. McHardy IH, Wu M, Shimizu-Cohen R et ai. Suoliston alkueläinten havaitseminen kliinisessä laboratoriossa. J Clin Microbiol. 2014; 52: 712-720.
12. https://www.cdc.gov/dpdx/diagnosticprocedures/stool/specimencoll.html.
13. https://catalog.hardydiagnostics.com/cp_prod/Content/pdf/Comments%20on%20TOTAL-FIX-HardyD.pdf.
14. Shane AL, Mody RK, Crump JA et ai. Vuoden 2017 Amerikan tartuntatautiseuran kliinisen käytännön ohjeet tarttuvan ripulin diagnosoimiseksi ja hallitsemiseksi. Clin Infect Dis. 2017; 65 (12): e45-80.