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Pregunta 1. ¿Qué pruebas se recomiendan para diagnosticar parásitos intestinales?

Mientras que los óvulos y el parásito (O & examen P) se solicita con mayor frecuencia, no se recomienda como prueba de rutina para el diagnóstico de parásitos intestinales en los Estados Unidos, ya que muchos parásitos intestinales no son detectables de manera confiable por O & P examen. Las recomendaciones de prueba para patógenos parásitos específicos se enumeran a continuación:

Pregunta 2. ¿Qué organismos patógenos se detectan comúnmente en un O & P examen (TC681X)?

Quest Diagnostics ofrece O & P pruebas de acuerdo con las pautas establecidas por la clínica Laboratory Standards Institute (CLSI) y en conjunto con las mejores prácticas publicadas en varios libros de prensa de la American Society of Microbiology (ASM) para optimizar la recopilación, las pruebas y la notificación de patógenos parasitarios humanos. O & Los exámenes P pueden detectar trofozoítos y / o quistes de importantes patógenos parasitarios humanos, incluidos Cryptosporidium sp, Coccidia sp, Entamoeba histolytica, E histolytica / dispar, Giardia sp, Isospora sp, Microsporidia sp , Schistosoma mansoni y Schistosoma haematobium, así como parásitos no patógenos que indican exposición a fuentes ambientales impuras.

Pregunta 3. ¿Existen recomendaciones para pruebas de parásitos específicos en determinadas poblaciones de pacientes?

Sí, las pruebas recomendadas pueden variar según los síntomas, el historial de viajes y la prevalencia geográfica de la enfermedad. En la siguiente tabla se proporciona orientación sobre este tema basada en las recomendaciones de ASM e IDSA2,14:

Pregunta 4. ¿Por qué ¿Se recomiendan múltiples muestras para exámenes de heces humanas?

Los parásitos solo se pueden eliminar de manera intermitente y puede ser necesario repetir la prueba para la detección. Para el examen de rutina en busca de parásitos antes del tratamiento, se recomienda un mínimo de 3 muestras, recolectadas en días alternos. Para los pacientes sin diarrea, 2 de las muestras deben recolectarse después de los movimientos normales y 1 después de un catártico, como el sulfato de magnesio. Si el paciente tiene diarrea, no use un laxante. La presentación de más de 1 muestra recolectada el mismo día generalmente no aumenta la sensibilidad de la prueba.2-5

Para las pruebas de antígeno de Giardia, se recomienda analizar las muestras recolectadas en 2 días diferentes para mejorar la sensibilidad. 5

Pregunta 5. ¿Qué medio de transporte acepta Quest Diagnostics para los exámenes de heces y por qué?

Los medios de transporte preferidos para los exámenes de huevos y parásitos en las heces incluyen un frasco único de Total-Fix o viales emparejados de formalina al 10% y PVA. Estos medios de transporte han cumplido con los criterios de verificación y validación de confiabilidad con respecto a nuestras metodologías específicas de prueba de patógenos parásitos humanos.6-13

Pregunta 6. ¿Qué medios de transporte no acepta Quest Diagnostics para los exámenes de heces y por qué?

No aceptamos Ecofix, Protofix, SAF o cualquier otro conservante fuera de los mencionados anteriormente. Cualquier medio de transporte además de los enumerados como «aceptables» anteriormente no ha sido validado o no pasó los criterios de validación para su uso con nuestras metodologías de prueba específicas.6

Pregunta 7. ¿Por qué no se recomiendan los estudios de heces para pacientes hospitalizados? ?

Los datos sugieren que para los pacientes que han estado hospitalizados durante más de 3 días, la diarrea generalmente es el resultado de causas no parasitarias.2

Pregunta 8. ¿Qué fuentes distintas de las heces son apropiados para el examen O & P?

La orina es aceptable para la detección de Schistosoma haematobium. La orina debe recolectarse alrededor del mediodía y enviarse en un recipiente a prueba de agua y transportado al laboratorio refrigerado tan pronto como sea posible.

El esputo o el lavado broncoaveolar pueden enviarse en Total-Fix, formalina al 10% o sin conservantes para su examen cuando hay huevos de Paragonimus westermani, larvas de Strongyloides stercoralis, Se sospecha larva de Ascaris lumbricoides o larva de anquilostoma. Los especímenes deben refrigerarse y transportarse al laboratorio lo antes posible.

Los CDC recomiendan las fuentes adicionales distintas de las heces que se enumeran a continuación.12 Tenga en cuenta que las pruebas de estas muestras pueden requerir la aprobación del director médico.

• Los aspirados duodenales deben enviarse en Total-Fix o formalina al 10% para su examen cuando se sospeche Giardia duodenalis o Strongyloides stercoralis.
• El material de sigmoidoscopia y los abscesos del hígado y los pulmones deben enviarse en Total-Fix o PVA cuando se sospecha de Entamoeba histolytica.

1. M-28-A2. Directriz CLSI. Procedimiento de recuperación e identificación de parásitos del tracto intestinal. Directriz aprobada, 2005.
2. García LS, Bruckner DA. Parasitología Médica Diagnóstica. 5ª ed. Washington, DC: Sociedad Estadounidense de Microbiología; 2007.
3. Shimizu RY, García LS. Capítulo 133: Recogida, transporte y procesamiento de muestras: parasitología. En Jorgensen JH, Pfaller MA, Carroll KC, et al, eds. Manual de Microbiología Clínica. 11ª ed. Washington, DC: Sociedad Estadounidense de Microbiología; 2015.
4. Leber AL., Ed. Manual de procedimientos de microbiología clínica. 4ª ed. Washington DC: Sociedad Estadounidense de Microbiología; 2016.
5. Wheatley WB. Un procedimiento de tinción rápida para amebas intestinales y flagelados. Soy J Clin Pathol. 1951; 21: 990-991.
6. Procedimiento del sistema de recolección de heces Total-Fix ™ de Medical Chemical Corporation, Inc. 2013.
7. Tille PM. Bailey & Microbiología diagnóstica de Scott. 13ª ed. San Luis, MO: Elsevier; 2014.
8. http://www.questdiagnostics.com/testcenter/TestCenterHome.action.
9. Garcia LS, Shimizu RY. Evaluación de la morfología de los protozoos intestinales en muestras fecales humanas conservadas en EcoFix: comparación de la tinción tricrómica de Wheatley y EcoStain. J Clin Microbiol. 1998; 36: 1974-1976.
10. Fedorko DP, Williams EC, Nelson NA, et al. Realización de tres inmunoensayos enzimáticos y dos ensayos de fluorescencia directa para la detección de Giardia lamblia en muestras de heces conservadas en ECOFIX. J Clin Microbiol. 2000; 38: 2781-2783.
11. McHardy IH, Wu M, Shimizu-Cohen R, et al. Detección de protozoos intestinales en el laboratorio clínico. J Clin Microbiol. 2014; 52: 712-720.
12. https://www.cdc.gov/dpdx/diagnosticprocedures/stool/specimencoll.html.
13. https://catalog.hardydiagnostics.com/cp_prod/Content/pdf/Comments%20on%20TOTAL-FIX-HardyD.pdf.
14. Shane AL, Mody RK, Crump JA, et al. 2017 Pautas de práctica clínica de la Sociedad de Enfermedades Infecciosas de América para el diagnóstico y manejo de la diarrea infecciosa. Clin Infect Dis. 2017; 65 (12): e45-80.