Centro di educazione clinica

Domanda 1. Quali test sono consigliati per diagnosticare i parassiti intestinali?

Mentre gli ovuli e il parassita (O & P) è ordinato più spesso, non è raccomandato come test di routine per la diagnosi di parassiti intestinali negli Stati Uniti poiché molti parassiti intestinali non sono rilevabili in modo affidabile da O & P esame. Le raccomandazioni sui test per specifici patogeni parassiti sono elencate di seguito:

Domanda 2. Quali organismi patogeni vengono comunemente rilevati in un O & P exam (TC681X)?

Quest Diagnostics offre il test O & P in conformità con le linee guida stabilite dalla Clinica Laboratory Standards Institute (CLSI) e di concerto con le migliori pratiche pubblicate in vari libri di stampa dellAmerican Society of Microbiology (ASM) per ottimizzare la raccolta, i test e la segnalazione di patogeni parassitari umani. Gli esami O & P possono rilevare trofozoiti e / o cisti di importanti patogeni parassitari umani tra cui Cryptosporidium sp, Coccidia sp, Entamoeba histolytica, E histolytica / dispar, Giardia sp, Isospora sp, Microsporidia sp , Schistosoma mansoni e Schistosoma haematobium, nonché parassiti non patogeni che indicano lesposizione a fonti ambientali impure.

Domanda 3. Esistono raccomandazioni per test specifici sui parassiti in determinate popolazioni di pazienti?

Sì, i test consigliati possono variare a seconda dei sintomi, della storia del viaggio e della prevalenza geografica della malattia. Una guida su questo argomento basata sulle raccomandazioni ASM e IDSA è fornita nella tabella seguente2,14:

Domanda 4. Perché più campioni consigliati per gli esami delle feci umane?

I parassiti possono essere eliminati solo in modo intermittente e potrebbe essere necessario ripetere il test per il rilevamento. Per lesame di routine dei parassiti prima del trattamento, si raccomanda un minimo di 3 campioni, raccolti a giorni alterni. Per i pazienti senza diarrea, 2 dei campioni devono essere raccolti dopo movimenti normali e 1 dopo un catartico, come il solfato di magnesio. Se il paziente ha la diarrea, non usare un lassativo. La presentazione di più di 1 campione raccolto nello stesso giorno di solito non aumenta la sensibilità del test.2-5

Per il test dellantigene Giardia, si consiglia di testare i campioni raccolti in 2 giorni diversi per migliorare la sensibilità. 5

Domanda 5. Quali mezzi di trasporto accetta Quest Diagnostics per gli esami delle feci e perché?

I terreni di trasporto preferiti per gli esami degli ovuli e dei parassiti nelle feci includono una singola fiala di Total-Fix o fiale accoppiate di formalina al 10% e PVA. Questi terreni di trasporto hanno soddisfatto i criteri di verifica e convalida per laffidabilità rispetto alle nostre specifiche metodologie di analisi dei patogeni parassitari umani.6-13

Domanda 6. Quali mezzi di trasporto Quest Diagnostics non accetta per gli esami delle feci e perché?

Non accettiamo Ecofix, Protofix, SAF o altri conservanti al di fuori di quelli sopra menzionati. Qualsiasi mezzo di trasporto oltre a quelli elencati come “accettabili” sopra non è stato convalidato o non ha superato i criteri di convalida per luso con le nostre metodologie di test specifiche.6

Domanda 7. Perché gli studi sulle feci non sono raccomandati per i pazienti ospedalizzati ?

I dati suggeriscono che per i pazienti che sono stati ricoverati in ospedale per più di 3 giorni, la diarrea è generalmente il risultato di cause non parassitarie.2

Domanda 8. Quali fonti diverse dalle feci sono appropriate per lesame O & P?

Lurina è accettabile per il rilevamento dello Schistosoma haematobium. Lurina deve essere raccolta intorno a mezzogiorno e inviata in un a prova di contenitore e trasportato al laboratorio refrigerato il prima possibile.

Lespettorato o il lavaggio broncoaveolare possono essere sottoposti a Total-Fix, formalina al 10% o senza conservanti per esame quando le uova di Paragonimus westermani, le larve di Strongyloides stercoralis, Si sospetta che Ascaris lumbricoides larve, o hookworm larve I campioni devono essere refrigerati e trasportati al laboratorio il prima possibile.

Il CDC raccomanda le fonti aggiuntive diverse dalle feci elencate di seguito.12 Si noti che il test di questi campioni potrebbe richiedere lapprovazione del direttore medico.

  • Gli aspirati duodenali devono essere sottoposti a Total-Fix o formalina al 10% per esame quando si sospetta Giardia duodenalis o Strongyloides stercoralis.
  • Il materiale per la sigmoidoscopia e gli ascessi del fegato e del polmone devono essere presentati in Total-Fix o PVA quando si sospetta Entamoeba histolytica.
  1. M-28-A2. Linee guida CLSI. Procedura per il recupero e lidentificazione dei parassiti dal tratto intestinale. Linee guida approvate, 2005.
  2. Garcia LS, Bruckner DA. Parassitologia medica diagnostica. 5a ed. Washington, DC: Società americana di microbiologia; 2007.
  3. Shimizu RY, Garcia LS. Capitolo 133: Raccolta, trasporto e trattamento dei campioni: parassitologia. In Jorgensen JH, Pfaller MA, Carroll KC, et al, eds. Manuale di microbiologia clinica. 11a ed. Washington, DC: Società americana di microbiologia; 2015.
  4. Leber AL., Ed. Manuale delle procedure di microbiologia clinica. 4a ed. Washington DC: American Society for Microbiology; 2016.
  5. Wheatley WB. Una procedura di colorazione rapida per amebe intestinali e flagellati. Sono J Clin Pathol. 1951; 21: 990-991.
  6. Medical Chemical Corporation, Inc. Procedura del sistema di raccolta delle feci Total-Fix ™. 2013.
  7. Tille PM. Bailey & Scott’s Diagnostic Microbiology. 13a ed. St Louis, MO: Elsevier; 2014.
  8. http://www.questdiagnostics.com/testcenter/TestCenterHome.action.
  9. Garcia LS, Shimizu RY. Valutazione della morfologia del protozoo intestinale in campioni fecali umani conservati in EcoFix: confronto tra colorazione tricromica di Wheatley ed EcoStain. J Clin Microbiol. 1998; 36: 1974-1976.
  10. Fedorko DP, Williams EC, Nelson NA, et al. Esecuzione di tre test immunoenzimatici e due test di fluorescenza diretta per il rilevamento di Giardia lamblia in campioni di feci conservati in ECOFIX. J Clin Microbiol. 2000; 38: 2781-2783.
  11. McHardy IH, Wu M, Shimizu-Cohen R, et al. Rilevazione dei protozoi intestinali nel laboratorio clinico. J Clin Microbiol. 2014; 52: 712-720.
  12. https://www.cdc.gov/dpdx/diagnosticprocedures/stool/specimencoll.html.
  13. https://catalog.hardydiagnostics.com/cp_prod/Content/pdf/Comments%20on%20TOTAL-FIX-HardyD.pdf.
  14. Shane AL, Mody RK, Crump JA, et al. Linee guida per la pratica clinica 2017 della Infectious Diseases Society of America per la diagnosi e la gestione della diarrea infettiva. Clin Infect Dis. 2017; 65 (12): e45-80.

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